Молекулярна детекція та описова епідеміологія інфекції пташиного аденовірусу у курей-бройлерів
DOI:
https://doi.org/10.31210/spi2026.29.02.25Ключові слова:
пташиний аденовірус, ПЛР у реальному часі, молекулярна поширеність, описова е підеміологія, курчата-бройлериАнотація
Пташині аденовіруси належать до епідеміологічно важливих вірусних патогенів, широко поширених у промисловому птахівництві в усьому світі, та є етіологічними факторами низки тяжких захворювань, що завдають суттєвих економічних збитків господарствам бройлерного типу. Це дослідження було проведено з метою встановлення чітких молекулярних доказів наявності збудника пташиного аденовірусу у курчат-бройлерів у комерційних господарствах провінції Діяла за допомогою оптимізованої полімеразної ланцюгової реакції в реальному часі, а також математичного моделювання меж його регіонального поширення. Для цього септичн відібрано 96 клінічних зразків тканин печінки від 32-добових курчат- бройлерів із клінічними ознаками печінкової дисфункції на різних приватних підприємствах. Після обробки та лізису тканин вірусну геномну ДНК ізолювали за допомогою стандартних екстракційних матриць на основі силікагелевих мембран. Молекулярний скринінг виконували за допомогою платформи якісної ПЛР у реальному часі з використанням специфічних олігонуклеотидних праймерів (L1-F: 5′-GACGGCATTTGGGGAGGAATT-3′ та L1-R: 5′-GCTGAGGATTGAGCTTCACCC-3′), спрямованих на гіперваріабельну ділянку петлі L1 гена гексону вірусу, з подальшим безперервним аналізом градієнта дисоціації після ампліфікації від 58°C до 95°C. Дослідженнями встановлено, що із загальної кількості досліджуваних зразків 20 вивилися позитивно реагуючими, що дало змогу встановити регіональний рівень поширеності вірусної інфекції на рівні 20,8 %. Описове статистичне моделювання дисперсії успішно спрогнозувало межі істинного очікуваного поширення в межах стабільного 95 % довірчого інтервалу від 12,7 до 28,9 % при розрахунковій стандартній похибці 4,14. Крім того, непараметричний критерій згоди Хі-квадрат продемонстрував інтенсивне, високозначуще відхилення від теоретичних рівномірних частот (χ² = 32,66, df = 1, P < 0,001), визначаючи високу активність циркуляції патогену в регіональній системі птахівництва, попри статистичне переважання негативних зразків (79,2 %). Зафіксовані кінетичні графіки ампліфікації продемонстрували швидку експоненціальну появу сигналу флуоресценції між 15 і 22 циклами, тоді як оцінка кривої плавлення виявила чіткі, поодинокі піки дисоціації, центровані приблизно на 85°C, що підтверджує абсолютну специфічність амплікону та повну відсутність артефактів праймер-димерів або неспецифічних продуктів переносу. Отримані дані визначають, що циркуляція пташиного аденовірусу чітко встановлена зі значною частотою в регіональних птахівничих мережах, підтверджуючи, що ПЛР у реальному часі залишається винятково швидким, високоточним і надійним інструментом діагностичного скринінгу для раннього епідеміологічного картування.
Посилання
1. Al-Obaidy, A. T., Al-Azzawi, A. K., & Al-Bayati, A. J. (2026). Exploring hydropericardium hepatitis syndrome (HHS) in broiler chickens: A comprehensive clinical and histopathological study in Diyala governorate. Diyala Journal for Veterinary Sciences, 3(4), 27–49. https://doi.org/10.71375/djvs.2025.03403
2. Schachner, A., Matos, M., Grafl, B., & Hess, M. (2017). Fowl adenovirus-induced diseases and strategies for their control – a review on the current global situation. Avian Pathology, 47(2), 111–126. https://doi.org/10.1080/03079457.2017.1385724
3. Marek, A., Günes, A., Schulz, E., & Hess, M. (2010). Classification of fowl adenoviruses by use of phylogenetic analysis and high-resolution melting-curve analysis of the hexon L1 gene region. Journal of Virological Methods, 170(1-2), 147–154. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2010.09.019
4. Ruan, S., Zhao, J., He, Z., Yang, H., & Zhang, G. (2018). Analysis of pathogenicity and immune efficacy of fowl adenovirus serotype 4 isolates. Poultry Science, 97(8), 2647–2653. https://doi.org/10.3382/ps/pey113
5. Niczyporuk, J. S. (2017). Molecular characterisation of fowl adenovirus type 7 isolated from poultry associated with inclusion body hepatitis in Poland. Archives of Virology, 162(5), 1325–1333. https://doi.org/10.1007/s00705-017-3240-5
6. Thaeer, W., & Al-Azzawi, A. (2025). Histopathological investigation of fowl adenovirus (FAdV) infections in broiler chickens: A study in Diyala governorate. Diyala Journal for Veterinary Sciences, 3(1), 48–67. https://doi.org/10.71375/djvs.2025.03104
7. Hess, M. (2013). Aviadenovirus infections. In D. E. Swayne (Ed.), Diseases of poultry (13th ed., pp. 290–300). Wiley-Blackwell.
8. Abd El-Fatah, A. H., Samir, M., Ali, M. M., Afify, A., Shehata, O. S., & AlKhazindar, M. (2025). Infectious bursal disease virus a comprehensive review of challenges and advances in poultry health. Egyptian Journal of Chemistry, 161–181. https://doi.org/10.21608/ejchem.2025.366754.11422
9. OIE. (2021). Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. World Organisation for Animal Health (WOAH), Paris, France.
10. Haque, Md. E., Islam, T. R., Sigma, S. H., Hossain, Md. G., Hayat, S., Hossain, M. T., & Islam, Md. A. (2024). Pathological investigation, molecular characterization and first-time isolation of the predominant serotypes of fowl adenovirus (FAdV-D and E) from commercial poultry in Bangladesh. Frontiers in Microbiology, 15, 1490255. https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1490255
11. Islam, Md. M., Nadia, Mst. M. A., Islam, Md. R., Islam, Md. S., Sunny, S. A., Islam, M., Sultana, S., & Alam, Md. J. (2026). Fowl adenovirus infections: A comprehensive review of prevalence, pathogenesis, diagnosis, control, and economic impact. Poultry Science, 105(4), 106565. https://doi.org/10.1016/j.psj.2026.106565
12. Tamam, S. M., Yahiya, M. H., Hussein, A. S., Alenazi, N., Alghamdi, A. N., Abdel-Moneim, A. S., & Ewies, S. S. (2025). Molecular and pathological characterization of fowl adenovirus serotype 2 linked to inclusion body hepatitis in broiler chickens. Microbial Pathogenesis, 209, 108097. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2025.108097
13. Günes, A., Marek, A., Grafl, B., Berger, E., & Hess, M. (2012). Real-time PCR assay for universal detection and quantitation of all five species of fowl adenoviruses (FAdV-A to FAdV-E). Journal of Virological Methods, 183(2), 147–153. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2012.04.005
14. Toro, H., Gonzalez, C., Cerda, L., Hess, M., Reyes, E., & Geisse, C. (2000). Chicken anemia virus and fowl adenoviruses: association to induce the inclusion body hepatitis/hydropericardium syndrome. Avian Diseases, 44(1), 51–58. https://doi.org/10.2307/1592507
15. Mittal, D., Jindal, N., Tiwari, A. K., & Khokhar, R. S. (2013). Characterization of fowl adenoviruses associated with hydropericardium syndrome and inclusion body hepatitis in broiler chickens. VirusDisease, 25(1), 114–119. https://doi.org/10.1007/s13337-013-0183-7
16. Kardoudi, A., Benani, A., Kichou, F., Ouchhour, I., Erafii, K., & Fellahi, S. (2025). Evaluation of clinical, analytical, and genotyping performance of Hex L1 real-time PCR coupled with high-resolution melting curve analysis for fowl adenovirus outbreak investigation in Morocco. Frontiers in Veterinary Science, 12, 1654833. https://doi.org/10.3389/fvets.2025.1654833
17. Elbestawy, A., Ibrahim, M., Hammam, H., Noreldin, A., Bahrawy, A., & Ellakany, H. (2020). Molecular characterization of fowl adenovirus D species in broiler chickens with inclusion body hepatitis in Egypt. Alexandria Journal of Veterinary Sciences, 64(1), 110–117. https://doi.org/10.5455/ajvs.74411
18. Zia, N., Maqbool, A., Safdar, M., Habiba, U. I., Mehmood, A., Muhammad, U., Iqbal, Z., Iqbal, J., Mehmood, S., Khan, A., & Umar, S. (2019). Detection and phylogeny of fowl adenovirus associated with hydropericardium hepatitis syndrome in broilers. Pakistan Journal of Zoology, 51(6), 2091–2098. https://doi.org/10.17582/journal.pjz/2019.51.6.2091.2098
19. Peng, L., Liu, M., Cheng, M. C., & Chen, H. W. (2026). Characterization of fowl adenovirus isolates in Taiwan: genome, antigenicity, and pathogenicity. Veterinary Research, 57(1), 129. https://doi.org/10.1186/s13567-026-01793-z
20. Shosha, E. A. E., Eldaghayes, I., Abdel-Rahaman, S. E. A., Hussein, A., El Naggar, H. M., Gamaleldin, M. A., Fotouh, A., & Radwan, A. A. (2026). Pathogenicity and genotyping of fowl adenovirus-D serotype 2/11 circulating in commercial broilers in Egypt. Viruses, 18(2), 252. https://doi.org/10.3390/v18020252
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.