Розвиток та гістохімічне дослідження репродуктивної системи самок собак у постнатальний період
DOI:
https://doi.org/10.31210/spi2026.29.02.21Ключові слова:
дозрівання ендометрію, гістоморфометрія, нейтральні муцини, кора яєчника, розвиток матки, самки цуценятАнотація
Ранній постнатальний органогенез репродуктивної системи ссавців закладає критичну морфофункціональну основу для подальшого статевого дозрівання та фертильності. Дане дослідження присвячене характеристиці вікових закономірностей розвитку тканин яєчників, матки та яйцепроводів самок цуценят у хронологічному інтервалі між 3-м та 8-м тижнями постнатального періоду. Експерименти проводили на клінічно здорових тваринах, розділених на дві вікові групи. Зразки органів фіксували в 10 % нейтральному формаліні, заливали в парафін, нарізали зрізи товщиною 4–7 мкм та фарбували гематоксилін-еозином, алціановим синім (pH 2,5) та піддавали ШІК-реакції. Морфометрію шарів тканин виконували в програмі Fiji ImageJ з подальшим статистичним аналізом даних за допомогою двовибіркового t-критерію Стьюдента в пакеті програм SPSS. Гістохімічно встановлено початок функціонального дозрівання ендометрію, що виражалося у переході секреції нейтральних мукополісахаридів у маткових залозах від абсолютно негативної реакції у 3 тижні до слабкопозитивної у 8-тижневому віці. Морфометрично зафіксовано високозначущу вертикальну клітинну гіпертрофію епітелію слизової оболонки матки, висота якого збільшилася у 5,2 раза – з 5,50±0,93 мкм до 28,50±2,91 мкм (P=0.0001). Одночасно з цим поздовжнє видовження органів призвело до фізіологічного стоншення шарів, зокрема: товщина стінки матки зменшилася на 39,4 % – з 447,40±53,45 мкм до 271,30±40,45 мкм (P=0.0303), а товщина стінки яйцепроводу скоротилася на 39,3 % – з 220,00±29,74 мкм до 133,50±4,71 мкм (P=0.0207). На тлі повної цитологічної стабільності епітелію слизової оболонки яйцепроводу між 3-м та 8-м тижнями (10,00±1,76 мкм проти 11,90±1,53 мкм відповідно; P=0.4407), у корі яєчника спостерігався стабільний фолікулогенез із закономірним лінійним збільшенням діаметра примордіальних фолікулів на 23,6 % – з 27,50±1,20 мкм до 34,00±1,85 мкм (P<0.05). Отримані якісні та кількісні показники мають суттєву практичну цінність для ветеринарної морфології та ембріології, оскільки виступають еталонним віковим нормативом для діагностики вроджених патологій розвитку та ендокринних порушень у сук.
Посилання
1. Koopman, P., Gubbay, J., Vivian, N., Goodfellow, P., & Lovell-Badge, R. (1991). Male development of chromosomally female mice transgenic for Sry. Nature, 351(6322), 117–121. https://doi.org/10.1038/351117a0
2. Kobayashi, A., & Behringer, R. R. (2003). Developmental genetics of the female reproductive tract in mammals. Nature Reviews Genetics, 4(12), 969–980. https://doi.org/10.1038/nrg1225
3. Dressler, G. R. (2006). The cellular basis of kidney development. Annual Review of Cell and Developmental Biology, 22, 509–529.
4. Roly, Z. Y., Backhouse, B., Cutting, A., Tan, T. Y., Sinclair, A. H., Ayers, K. L., Major, A. T., & Smith, C. A. (2018). The cell biology and molecular genetics of Müllerian duct development. WIREs Developmental Biology, 7(3), e310. https://doi.org/10.1002/wdev.310
5. Cooke, P. S., Borsdorf, D. C., Ekman, G. C., Doty, K. F., Clark, S. G., Dziuk, P. J., & Bartol, F. F. (2012). Uterine gland development begins postnatally and is accompanied by estrogen and progesterone receptor expression in the dog. Theriogenology, 78(8), 1787–1795. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2012.05.028
6. Šťastná, D., & Šťastný, P. (2018). The morphological changes of uterus in postnatal development of heifers. Acta Fytotechnica et Zootechnica, 21(2), 52–59. https://doi.org/10.15414/afz.2018.21.02.52-59
7. Abiaezute, C. N., & Nwaogu, I. C. (2015). Postnatal development of the vagina in West African dwarf goat (Capra hircus). Journal of Cell and Animal Biology, 9(4), 31–37.
8. Orel, E., Ciglenecki, I., Thiabaud, A., Temerev, A., Calmy, A., Keiser, O., & Merzouki, A. (2023). An automated literature review tool (LiteRev) for streamlining and accelerating research using natural language processing and machine learning: Descriptive performance evaluation study. Journal of Medical Internet Research, 25, e39736. https://doi.org/10.2196/39736
9. Chawla, S., Jena, S., & Nayak, S. (2021). The laboratory Guinea pig. In Essentials of Laboratory Animal Science: Principles and Practices (pp. 239–251). Springer, Singapore.
10. Atiyah, A. A. (2014). Evaluation of general anesthesia induced by propofol, ketamine protocol in rabbits premedicated with diazepam. The Iraqi Journal of Veterinary Medicine, 38(2), 100–107. https://doi.org/10.30539/iraqijvm.v38i2.230
11. Naser, R. A. A., Al-Redah, S. A. A., Ahmed, E. S., Zghair, F. S., & Al-Ezzy, A. I. A. (2024). Comparative anatomy, histology, histochemistry, and immunohistochemistry of the esophagus in ostrich (Struthio camelus) and turkey (Meleagris gallopavo). Advances in Animal and Veterinary Sciences, 12(7), 1341–1347. https://doi.org/10.17582/journal.aavs/2024/12.7.1341.1347
12. Suvarna, K. S., Layton, C., & Bancroft, J. D. (2018). Bancroft's theory and practice of histological techniques. Elsevier Health Sciences.
13. AL-Harbawy, R. M. A., & Abood, D. A. (2024). A comparative histological, histometrical and hormonal study between the ovary and uterus of non-pregnant and pregnant local breed cat (Felis catus). University of Thi-Qar Journal of Agricultural Research, 13(1), 234–249. https://doi.org/10.54174/yx2aw115
14. Suad, Kh. A., Al-Shamire, J. S. H., & Dhyaa, A. A. (2018). Histological and biochemical evaluation of supplementing broiler diet with β-hydroxy-methyl butyrate calcium (β-HMB-Ca). Iranian Journal of Veterinary Research, 19(1), 27–34.
15. Tolosa, E., Li, W., Yasuda, Y., Wienhold, W., Denzin, L. K., Lautwein, A., Driessen, C., Schnorrer, P., Weber, E., Stevanovic, S., Kurek, R., Melms, A., & Brömme, D. (2003). Cathepsin V is involved in the degradation of invariant chain in human thymus and is overexpressed in myasthenia gravis. Journal of Clinical Investigation, 112(4), 517–526. https://doi.org/10.1172/jci200318028
16. George, D., & Mallery, P. (2019). IBM SPSS Statistics 26 step by step: A simple guide and reference. Routledge. https://doi.org/10.4324/9780429056765
17. Andersen, A. C., & Simpson, M. E. (1974). The ovary and reproductive cycle of the dog (Beagle). Theriogenology, 1(1), 39–42. https://doi.org/10.1016/0093-691x(74)90062-4
18. Yan, W., Chen, J., Wiley, A. A., Crean-Harris, B. D., Bartol, F. F., & Bagnell, C. A. (2008). Relaxin (RLX) and estrogen affect estrogen receptor α, vascular endothelial growth factor, and RLX receptor expression in the neonatal porcine uterus and cervix. Reproduction, 135(5), 705–712. https://doi.org/10.1530/rep-08-0014
19. Tarleton, B. J., Wiley, A. A., Spencer, T. E., Moss, A. G., & Bartol, F. F. (1998). Ovary-independent estrogen receptor expression in neonatal porcine endometrium. Biology of Reproduction, 58(4), 1009–1019. https://doi.org/10.1095/biolreprod58.4.1009
20. Desjardins, C., Macmillan, K. L., & Hafs, H. D. (1968). Reproductive organ DNA and RNA of male and female rats from birth to 100 days of age. The Anatomical Record, 161(1), 17–22. https://doi.org/10.1002/ar.1091610102
21. Pluta, K., Irwin, J. A., Dolphin, C., Richardson, L., Fitzpatrick, E., Gallagher, M. E., Reid, C. J., Crowe, M. A., Roche, J. F., Lonergan, P., Carrington, S. D., & Evans, A. C. O. (2011). Glycoproteins and glycosidases of the cervix during the periestrous period in cattle1. Journal of Animal Science, 89(12), 4032–4042. https://doi.org/10.2527/jas.2011-4187
22. Bagade, P. S., Mugale, R. R., Thakur, P. N., & Kapadnis, P. J. (2018). Histological study of uterus in Osmanabadi goat. International Journal of Science, Environment and Technology, 7(4), 1311–1315.
23. Dean, M. (2019). Glycogen in the uterus and fallopian tubes is an important source of glucose during early pregnancy. Biology of Reproduction, 101(2), 297–305. https://doi.org/10.1093/biolre/ioz102
24. Honaramooz, A., Aravindakshan, J., Chandolia, R. K., Beard, A. P., Bartlewski, P. M., Pierson, R. A., & Rawlings, N. C. (2004). Ultrasonographic evaluation of the pre-pubertal development of the reproductive tract in beef heifers. Animal Reproduction Science, 80(1-2), 15–29. https://doi.org/10.1016/s0378-4320(03)00136-2
25. Farouk, S. M., & Kamel Osman, A.-H. (2012). Histogenesis of the vagina of the one-humped camel (Camelus dromedarius): Morphological evidence of the histochemical aspects. Cell &Amp; Developmental Biology, 01(03), 105. https://doi.org/10.4172/2168-9296.1000105
26. Chelikani, P. K., Ambrose, J. D., & Kennelly, J. J. (2003). Effect of dietary energy and protein density on body composition, attainment of puberty, and ovarian follicular dynamics in dairy heifers. Theriogenology, 60(4), 707–725. https://doi.org/10.1016/s0093-691x(03)00088-8
Downloads
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
